WWW.DISS.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА
(Авторефераты, диссертации, методички, учебные программы, монографии)

 

Pages:     | 1 || 3 |

«МЕТОДЫ ЭКОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ Модуль 1: Изучение животных Учебно-методическое пособие Рязань 2009 ББК 28.081я73 М54 Печатается по решению редакционно-издательского совета ...»

-- [ Страница 2 ] --

Большинство методов оценки каких-либо показателей водоемов (например, качества воды) по единовременной серии проб не выдерживает критики. Например, если приехать в пустыню Сахара весной и провести там разовое обследование, то можно будет сделать предположение, что природные условия этого региона крайне благоприятны для выращивания фруктов: весной там тепло и достаточно влаги. Однако через месяц наступит сухой сезон и пустыня станет безжизненной.

Поэтому выполненные за одну неделю исследования планктона не представляют какого-либо интереса для ученых, так как дают информацию только об этой неделе этого года, а не о строении и функциях сообщества в целом.

Долговременные исследования должны проводиться в течение длительного периода времени и по одной и той же методике, даже если она потом покажется не очень удачной или несовременной. Иначе нельзя будет сопоставить результаты за разные годы и определить тенденции изменчивости.

Конечно, идеально было бы собрать и учесть всех животных планктона. Однако это весьма сложно из-за гигантской разницы в их размерах — от 20 мкм до нескольких миллиметров.

В данном пособии описаны методы учета мезопланктона размером 1 мм и более (Daphnia, Poliphemus и др.) и микропланктона размером —1000 мкм (личинки веслоногих рачков наутилусов и копеподитов, ветвистоусые рачки Воsmina, Diaphanosoma коловратки и др.).

Метод отбора проб зависит от типа водоема, его глубины и размера.

Планктонная сеть (в простейшем виде — сеть Апштейна) представляет собой сачок, изготовленный из специальной ткани, пропускающей воду и задерживающей планктон, — так называемого «планктонного газа», с резервуаром для сбора накапливающихся во время траления (процеживания) животных.

Планктонная сеть может быть изготовлена самостоятельно. Для этого необходимы мельничное сито с ячейкой 0,15—0,1 мм, несколько кусков проволоки, плотная ткань и планктонный стакан.

В качестве планктонного газа можно использовать «парашютный»

капрон, но ни в коем случае не марлю: она очень мягкая, а диаметр ячеи у нее слишком большой.

Имеющийся в наличии материал выкраивается в виде конуса и пришивается к металлическому обручу в верхней части и к планктонному стакану в нижней. В обоих случаях пришивать «газ» следует не непосредственно к обручу или стакану, а к полоске ткани — льна, бязи, хлопчатобумажной: иначе он быстро прорвется в местах соединения.



В гидробиологическом монитринге приняты два стандартных размера планктонной сети — с диаметром входного отверстия 25 или 40 см и длиной конуса 55 или 100 см соответственно.

Фирменный планктонный стакан можно заменить любым стеклянным или пластмассовым сосудом, например, пузырьком из-под силикатного конторского клея с вырезанным дном с устройством для слива пробы через дно. В качестве такого устройства может использоваться резиновая трубка с аптекарским зажимом, которая надевается на горлышко пузырька, или просто отверстие затыкается резиновой пробкой. Место соединения стакана и сети обшивается тканью, благо пластмассу можно прошить.

Основные формы использования планктонной сети — траление и процеживание.

При проведении гидробиологического исследования методом траления следует один раз в месяц с лодки брать 3 пробы планктонной сетью, облавливая горизонт 0—10 м. Если глубина водоема менее 10 м, то траление следует проводить от дна до поверхности, стараясь не опускать сеть на дно, так как при этом туда попадет много мути и донных животных, не относящихся к планктону.

При тралении, зная диаметр обруча, можно рассчитать объем обловленного столба воды V = Rh.

Для определения глубины отбора проб на веревке, за которую ведется траление, нужно через каждый метр сделать отметки, например, навязать узелки или нашить цветные ленточки или тесьму.

Зачерпывание воды с целью ее процеживания производят сосудом определенного, заранее известного объема, например, ведром. Пробы воды «сгущают», выливая воду в горло планктонной сети. При этом вся вода из ведра выливается через стенки конуса планктонной сети, а искомый зоопланктон оседает в планктонном стакане.

Зная объем одного ведра и количество зачерпнутых ведер, определяют объем процеженной воды.

Объем «процеживаемой» (облавливаемой) воды зависит от численности зоопланктона и колеблется в пределах от 10 (в богатых водоемах летом) до 200 (зимой) литров. В любом случае количественные пробы при подсчете приводятся к одному стандартному объему, например, 1 л.

Метод процеживания особенно важен и чаще всего используется для изучения прибрежного планктона, видовой состав которого отличается от такового в центре водоема.

Послойный отбор проб можно осуществить при помощи батометра — прибора для взятия проб воды с разных глубин.

В классическом виде батометр представляет собой цилиндр, который можно опустить на определенную глубину, там закрыть и затем извлечь.

К сожалению, сделать классический батометр не так просто. Однако можно посоветовать следующий способ. В качестве батометра можно использовать простую стеклянную бутылку с узким горлышком, утяжеленную каким-либо грузом, с пробкой (идеально — с пробковой). К бутылке привязывают две веревки — одна за горлышко бутылки, вторая — за пробку.

Опустив бутылку на нужную глубину (для того, чтобы она утонула, и привязывается груз), необходимо резко выдернуть пробку (затыкать ее туго поэтому не следует) и через 1—2 минуты как можно быстрее вытащить бутылку на поверхность. При большой скорости подъема и узком горлышке вода из вышележащих слоев практически не попадет внутрь.





Пробы, поднятые на поверхность с помощью батометра, также следует «сгущать», используя планктонную сеть, и затем рассчитывать объем процеженной воды.

Поскольку объем процеживаемой воды должен быть по возможности большим, батометр следует сделать как можно большего размера, например, использовать 2-литровую стеклянную или пластиковую бутылку или иной сосуд большого размера с узким горлом.

На веревке, к которой привязана бутылка, также следует через каждый метр сделать отметки для определения глубины отбора проб.

При наличии батометра или прибора, его заменяющего, можно проследить суточные миграции зоопланктона из глубины к поверхности и обратно.

Для отслеживания сезонных изменений в пресноводном сообществе пробы обычно берутся 2 раза в месяц. Для приблизительных результатов можно предложить такой график отбора проб (для средней полосы):

— 1-й отбор: начало мая (начало подъема численности различных животных);

— 2-й отбор: конец мая (пик численности веслоногих ракообразных и их личинок);

— 3-й отбор: начало-середина июня (пик численности дафний);

— 4-й отбор: конец июня («цветение» водоема, угнетенное состояние зоопланктона, развитие мелких форм);

— 5-й, 6-й, 7-й отборы: по одной пробе в июле, августе, сентябре;

— 8-й отбор: октябрь (в это время можно обнаружить самцов ветвистоусых ракообразных, по которым зачастую легче определить их до вида).

Распределение точек, в которых отбираются пробы за одну дату, обычно производится по некоей оси. Одна проба берется в центре водоема, другая — примерно на полпути к берегу, третья — в прибрежье.

Обычно пробы берут утром, когда на водоеме нет ветра и волнения, препятствующих работе.

Численность планктонных животных зимой весьма мала, особенно в подледный период до самого таяния льда. Ранней весной происходят весьма интересные события, но отбирать пробы следует осторожно: лед уже непрочен, чтобы по нему выйти на озеро, но в то же время еще невозможно использовать лодку.

В реках численность зоопланктона весьма низка, поэтому лучше всего отбирать пробы в заводях, где он многочисленнее.

По окончании траления или процеживания воду, скопившуюся в планктонном стакане, вместе с осевшим там зоопланктоном (что собственно и является «пробой») аккуратно сливают в чистый — дважды сполоснутый «местной» водой — сосуд подходящего объема. В качестве сосуда для временного хранения проб можно использовать любые стеклянные и пластмассовые пузырьки, маленькие бутылочки и т.п.

объемом 50—200 мл с герметически заворачивающимися крышками.

Пузырек с временно, до прихода в лабораторию, хранящейся пробой заворачивают в бумагу, на которой делают пометки о месте и времени отбора пробы.

В лаборатории отобранные пробы сразу же, в живом виде, исследуют или фиксируют.

Перед фиксацией пробы можно разбавить или, наоборот, сгустить путем откачивания лишней воды, пользуясь «закрытой пипеткой», т.е.

пипеткой, в которой всасывающее отверстие перекрыто плактонным «газом». Главное при этом, чтобы не пропала первичная информация о том, из какого объема воды данная пробы была получена.

Фиксируют пробы обычно формалином из такого расчета, чтобы в результате получился 4 %-й раствор. Поскольку обычно формалин имеется в виде 40 %-го раствора, берется 1 часть формалина на 9 частей водной пробы. Однако при такой фиксации пробы должны храниться в теплом месте, так как при отрицательных температурах формалин дает сильный осадок.

Другой фиксатор — спирт. Чтобы получить 70 %-й раствор для непродолжительного хранения, можно в пробу добавить водки.

Каждая проба, оставляемая на хранение или предназначенная для дальнейшей транспортировки, должна быть снабжена этикеткой, на которой необходимо указать следующие данные: название водоема и его местонахождение, дата проведения исследований, место сбора, глубина (горизонт), орудие лова.

Этикетку нужно писать тушью на пергаментной бумаге или кальке и вложить ее внутрь пузырька, в котором пробы будут храниться.

Необходимо организовать учет всех проб в специальном полевом журнале, в который записываются время взятия пробы, ее порядковый номер, а также вся информацию, указанная на этикетке. Поскольку у организмов в планктоне наблюдаются суточные миграции, желательно также снабжать записи информацией о часе отбора проб, а также метеорологическими данными: температура воздуха и воды у поверхности, облачность, сила ветра и т.д.

Задачей качественной обработки проб является установление видового состава организмов, входящих в состав планктона. Определение некоторых животных может быть проведено только в живом состоянии, поэтому вместе с «фиксируемыми» следует взять несколько «живых»

качественных проб, которые необходимо просматривать немедленно по возвращении домой (в лабораторию). Только живыми определяют, например, коловраток, которые при фиксировании сморщиваются. Ракообразные в формалине становятся менее прозрачными.

Даже незначительные следы формалина или спирта могут убить животных, поэтому обязательно следует разделять посуду, используемую для работы с живыми и фиксированными пробами.

Часть пробы из пузырька, куда была собрана вода с планктоном после траления (процеживания), переносится пипеткой в маленький сосуд, например, чашку Петри, где рассматривается под бинокуляром при малом увеличении (8 x 2 — 8 x 4, т.е. в 16—32 раза). Из нее пипеткой отлавливаются отдельные особи и помещаются на предметные стекла для рассматривания под большим увеличением или под микроскопом (8 х 10 — 8 х 40, т.е. в 80 — 320 раз). При рассматривании под микроскопом капля с объектом накрывается покровным стеклом, которое должно быть на пластилиновых «ножках» (маленьких шариках пластилина), чтобы не раздавить нежное животное. Отметим, что под покровным стеклом движение живого животного весьма замедляется или вообще прекращается. Конечно, нужно следить за тем, чтобы не раздавить объект. Для очень мелких объектов стекло можно не снабжать ножками. Замедление движения достигается также добавлением вязкого вещества: например, крахмального клейстера.

Определение проводится под разными увеличениями бинокуляра или микроскопа. Для изучения мелких деталей под микроскопом особо эффективны водоиммерсионные объективы, в которых между покровным стеклом рассматриваемого образца и нижней линзой объектива капается капля жидкости. Однако применение масляной иммерсии невозможно для изучения живых объектов, поскольку вязкость масла больше вязкости воды, что приводит к прилипанию покровного стекла к объективу и его отслоению от предметного стекла.

Объекты, не требующие определения в живом состоянии, можно изучить и определить, извлекая их пипеткой из фиксированных проб.

Часть пробы также помещается в чашку Петри, после чего из нее отбираются отдельные индивидуумы для определения. Для увеличения прозрачности в кашпо на предметное стекло добавляется глицерин. Осторожно сдвигая покровное стекло относительно предметного, можно добиться изменения положения объекта для его изучения с другой стороны.

Определение проводится по специальным определителям, указанным ниже. Наиболее современным и приемлемым является 5-томный «Определитель пресноводных беспозвоночных России». Его первый том, посвященный низшим беспозвоночным, вышел в 1994 году.

Задачей количественной обработки является оценка численности различных видов животных в пробе и во всем водоеме. Если в пробе содержится малое количество животных, т.е. потенциально можно пересчитать все особи примерно в пределах одной сотни, она просчитывается целиком. Для этого ее содержимое сгущается и выливается в специальную счетную камеру.

Наиболее употребительны два типа камер.

1. Камера Горяева — небольшой сосуд, на дне которого имеются насечки в виде квадратов с определенной длиной стороны, например, 1 см. Проба выливается в камеру, после чего камера перемещается под бинокуляром.

Достаточно просто изготовить камеру самостоятельно. Для этого надо взять пластмассовую одноразовую чашку Петри и расчертить (процарапать) на ней сетку со стороной квадрата 1 см. На стеклянную чашку царапины можно нанести стеклорезом, острым углом напильника и т.п.

С обратной стороны чашки Петри квадраты следует пронумеровать.

Подсчитав число особей каждого вида в нескольких квадратах (или даже во всех), можно определить общее число особей каждого вида в пробе: Nсумм = Ncp х (Sкв / Sкам), где Nсумм — общее число особей одного вида в пробе, Ncр — среднее число особей в одном квадрате, Sкв — площадь квадрата, Sкам — площадь камеры. Поскольку объем воды, обловленный планктонной сетью, известен (см. выше), можно легко вычислить численность особей вида в литре воды: Мcр = Мсумм / Vобл, где Мср — средняя численность вида в литре воды водоема;

Мсумм — численность вида в пробе; Vобл — объем обловленной воды.

2. Камера Богорова гораздо более удобна для подсчета «густых»

проб, содержащих много особей. Представляет собой толстую пластинку из стекла или оргстекла с выемкой в виде лабиринта. Изготовить камеру Богорова можно самостоятельно. Идеальный способ изготовления — из толстого (1 см) оргстекла с помощью фрезы (до 0,5 см). При отсутствии фрезы можно склеить лабиринт из полосок оргстекла. Ширина выемок лабиринта должна быть не более 0,5 см, чтобы вся вода с животными умещалась в поле зрения бинокуляра при 20—30-кратном увеличении (обычно этого бывает достаточно для проведения количественных учетов).

Высота выемок в лабиринте должна быть в пределах 0,5—1 см.

Длина лабиринта значения не имеет и обычно составляет 40 см (четыре «изгиба» по 10 см). Проба целиком выливается в камеру, после чего камера перемещается под бинокуляром, так что весь лабиринт, от начала до конца, оказывается в поле зрения. При этом производится подсчет всех попадающих в поле зрения животных. Расчет производится на объем обловленной воды.

В большинстве случаев невозможно подсчитать всех особей массового вида в пробе. Проба выливается в мерный цилиндр, после чего ее объем доводится до определенного стандарта, например 0,5 л, путем доливания воды или, наоборот, откачивания ее « закрытой» пипеткой. После этого из сосуда с помощью штемпель-пипетки известного объема отбирается некий малый объем воды с организмами.

Можно использовать и обычный шприц без иглы. Содержимое нескольких штемпель-пипеток выливают в счетную камеру. Так просчитывается лишь часть пробы. Например: пусть объем пробы доведен до 500 мл, отобрано 10 штемпель-пипеток по 5 мл, т.е. всего мл — таким образом будет просчитана 1/10 часть объема всей пробы.

Перед каждым отбором штемпель-пипеткой воду в мерном цилиндре необходимо взболтать.

Таким образом для каждой точки и каждой даты должны быть получены данные по численности массовых видов в течение сезона. Особенно наглядно изменения численности отражаются в графиках.

Цели проведения исследований и варианты работ по изучению зоопланктона весьма разнообразны. Достаточно наглядно сопоставление видового состава в аналогичных загрязненных и незагрязненных водоемах. Например, если имеются два пруда примерно одного размера, один из которых расположен вблизи крупного предприятия, то вполне возможно выявить в видовом составе и в динамике численности отдельных видов последствия химического загрязнения. Совершенно необязательно при этом, что численность животных в водоеме, подвергшемся загрязнению, ниже, чем в чистом. Однако видовой состав загрязненного водоема почти всегда обеднен. В нем встречаются обычно лишь отдельные виды, приспособленные к перенесению неблагоприятных условий.

В известной степени большее число видов является прямым показателем благоприятной ситуации в водоеме. Однако число видов — это свойство конкретного водоема, и нельзя сказать, что если в водоеме 25 видов, то он обеднен, а если 50 видов, то богат. Только в результате сопоставления аналогичных водоемов можно делать какиелибо выводы.

Весьма продуктивно в подобном случае сопоставление фауны в реке до некоего предприятия и после него по течению. Пробы при этом надо отбирать в заводях со стоячей водой. Такое сравнение может прямо указать на неблагоприятное влияние загрязнения.

При обычных условиях в открытой части озер и водохранилищ из ветвистоусых рачков наиболее многочисленны (доминируют) крупные дафнии (D. galeata, D. lonyispina, D. hyalina) и крупные босмины (В.согеgoni, В.longis рinа). В случае если в планктоне изобилуют более мелкие формы (D. cuculatf, B. loryolostris, Diafanosoma bruchiurum), можно предположить, что в озере живет большое число рыб, мальки которых выедают в первую очередь именно относительно крупных планктонных животных. Сопоставляя данные о доминантах за разные годы, можно уловить тенденцию к увеличению или уменьшению поголовья рыб в водоеме.

Однако на смену доминантов могут влиять и другие факторы. Например, в последнее время во многих озерах наблюдается увеличение интенсивности «цветения», т.е. развитие летом гигантского числа одноклеточных и колониальных водорослей. Это связано с так называемой антропогенной эвтрофикацией, т.е. увеличением содержания в водоеме минеральных солей и органических веществ, необходимых для развития водорослей за счет смыва удобрений с полей, сбросов отходов органической природы и т.д. «Цветение» по-разному переносится разными животными, некоторые подавляются им, другие, наоборот, развиваются в большом числе, что может также привести к смене доминантов в водоеме. В таком случае в середине лета будут доминировать одни виды, а весной и в начале лета, а также в конце лета и осенью — другие.

Таким образом, для корректной оценки состояния водоема и планктона в нем желательно иметь серию проб, взятых в течение нескольких лет несколько раз за сезон. Анализ только такой серии может дать адекватную информацию о событиях, происходящих в водоеме.

5. МЕТОДИКА КОМПЛЕКСНЫХ КРУГЛОГОДИЧНЫХ

ИССЛЕДОВАНИЙ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ

Общие для любого времени года методы изучения беспозвоночных.

Методы и программа изучения беспозвоночных весной.

В процессе использования данных методических рекомендаций необходимо помнить, что календарный план составлен для средней полосы европейской части России, поэтому при использовании пособия в других регионах, а также в случаях длительных аномальных изменений погоды необходимо вносить коррективы в сроки применения методик.

Большинство методик сбора и учета насекомых, используемых при проведении круглогодичных исследований, подробно описаны в разделе «Методы сбора и учета численности насекомых». Поэтому в данном разделе основное внимание уделено описанию последовательности их применения и некоторым специфическим методикам изучения беспозвоночных.

Например, ряд методик позволяет исследовать специфичные группы беспозвоночных, отлов которых общеизвестными способами невозможен или малоэффективен.

Применение описанных методик позволяет полностью исключить гибель редких беспозвоночных и до минимума сократить число случайных жертв при проведении исследований.

Основная часть методик, применимых в течение всего года, относится к водным беспозвоночным. Связано это с тем, что в большинстве водоемов активность беспозвоночных наблюдается круглогодично, так как температура воды даже в самые сильные морозы не опускается ниже нуля градусов.

Водных насекомых (клопов, жуков и др.) и их личинок можно собирать при помощи водного сачка на длинной рукоятке методом индивидуального отлова в толще воды и у дна, а также методом кошения по подводной растительности.

Зимой наиболее удачные уловы бывают на участках водоемов с родниками, а также на заболоченных участках, замерзающих только в самые холодные периоды. Кроме сачка можно пользоваться различными вариантами крючков, прикрепленных на длинные рукоятки, или даже сельскохозяйственными граблями, при помощи которых легко извлекаются фрагменты водной растительности или мелкие коряги, в которых часто прячутся беспозвоночные.

Вне зависимости от времени года можно находить насекомых, червей и многоножек под корой пней и стволов засохших деревьев. Для их извлечения необходимо вооружиться стамеской или крепким ножом, так как наиболее интересные животные находятся под корой, которая еще крепко держится на стволе. Следует помнить, что состав «подкорников» в значительной степени зависит от породы дерева.

В марте в теплых помещениях часто появляются насекомые, у которых под воздействием тепла пробуждение наступает раньше, чем в природе. Особенно интересный материал можно обнаружить в старых деревянных постройках, где на свет окон слетаются различные виды жуков, мух и перепончатокрылых. Эти насекомые либо попадают в дома с почвой для комнатных растений, либо вылетают из различных трещин и щелей, а также ходов короедов и дровосеков.

На освещенных солнцем, защищенных от ветра полянах и опушках целесообразно посыпать небольшие участки (1—2 м2) пеплом или землей, чтобы ускорить таяние снега и прогревание почвы. Допустимо также раскладывание кусков листового железа, темной полиэтиленовой пленки и т.п. После схода снега на данном участке можно наблюдать беспозвоночных во время самых ранних оттепелей.

Когда наступают первые весенние оттепели, в ясную погоду на стенах домов и скалах, особенно с южной стороны, можно наблюдать скопления мух и некоторых других насекомых, которые выползают из щелей и греются на солнце. В этот период они менее подвижны по сравнению с теплым периодом, что облегчает их отлов.

До наступления устойчивой теплой погоды необходимо устанавливать ловчие пояса на стволы деревьев, для того чтобы собрать насекомых-дендробионтов. Представители этой группы животных зимуют в основном в подстилке, а после схода снежного покрова мигрируют в крону по стволам деревьев. Ловчие пояса делают из полос бумаги, жгутов соломы или мешковины шириной 15—20 см. Ствол дерева на высоте около 50 см предварительно обмазывают глиной и к этому месту после высыхания глины при помощи веревки или проволоки привязывают ловчий пояс, который один раз в 10—12 дней снимают и внимательно осматривают. Больше всего в такие ловушки попадается жуков, клопов и гусениц бабочек.

Особенно интересный материал можно собрать во время паводка на реках. Для этого нужно найти несколько кусков рыхлого, пористого пенопласта размером не менее 10x10x10 см и установить их в качестве ловушек на речных наносах — в местах скопления различного мусора, травы, ветвей деревьев. Насекомые, попавшие в воду, концентрируются в наносах и охотно прячутся в порах пенопласта.

Так, например, 5 апреля 1995 года на реке Усмань в куске пенопласта размером 50x50x12 см скопился 1571 экземпляр беспозвоночных из различных групп: жуков, клопов, цикадок, пауков, коллембол, наездников, костянок и др. Наиболее многочисленными были жуки — экземпляров 84 видов из 16 семейств, причем наряду о обычными и многочисленными видами попался и ряд редких. Любопытно отметить, что 10 апреля того же года в куске пенопласта вдвое меньших размеров было обнаружено 75 видов жуков.

Таким образом, раскладывая пенопластовые ловушки, можно не только собрать уникальный материал, но и спасти от гибели множество беспозвоночных.

Если не удалось найти пористый пенопласт, можно исследовать речные наносы следующим образом. При помощи багра или граблей вытаскивают на берег фрагменты наносов и разбирают их вручную.

Чтобы разбирать материал было легче и удобнее, предварительно следует разложить на берегу кусок полиэтиленовой пленки. В наносах можно обнаружить наряду с мелкими беспозвоночными множество крупных и средних размеров водных жуков, которые не попадают в пенопластовые ловушки.

В период появления первых проталин, когда талые воды начинают скапливаться во всех низменных местах, даже небольшие лужи могут предоставить любопытный материал для энтомологов. Дело в том, что при затоплении открывшихся от снега участков почвы начинают всплывать беспозвоночные, зимовавшие в подстилке.

Так, например, 9 апреля 1996 года на участке пойменного луга в заповеднике «Галичья гора» в результате получасовой экскурсии по небольшим лужам удалось обнаружить 207 экземпляров жуков, принадлежащих к 33 видам. Кроме жуков на поверхности воды были отмечены клопы, перепончатокрылые, мухи, пауки, цикадки и ряд других групп беспозвоночных.

Еще более удачными бывают сборы насекомых в местностях, где есть участки, ежегодно затопляемые талыми водами (низины, болота, балки и др.). Беспозвоночные с этих участков каждой осенью мигрируют к границам максимального затопления и концентрируются под различными предметами, лежащими на почве, — стволами деревьев, камнями и др.

Например, в середине апреля 1994 года на границе заболоченного луга с участком соснового леса (Усманский бор) под лежащим на почве бревном длиной 2 м оказалось 316 экземпляров жуков и несколько десятков представителей прочих групп беспозвоночных.

С первой декады апреля, при условии теплой погоды, начинается лет насекомых на свет. Особенно интересные сборы могут быть в случае установки у поверхности почвы светоловушки. Связано это с тем, что многие насекомые, в частности, некоторые виды жуков-долгоносиков, ряд бескрылых форм перепончатокрылых и т.п., не умеют летать, но реагируют на освещение. Кроме того, в этот период года на свет могут прилететь виды, которые активны только ранней весной и поздней осенью, что позволяет настоятельно рекомендовать ранневесенние сборы насекомых светоловушкой.

В апреле, когда начинается сокодвижение берез, на поврежденных деревьях концентрируется ряд насекомых, что тоже можно использовать при проведении энтомологических исследований. Необходимо заметить, что трещины на березах — обычное явление в природе, связанное с морозами, ветром и прочими естественными причинами, поэтому для исследования насекомых, привлекаемых березовым соком, ни в коем случае нельзя делать искусственных повреждений. Достаточно обследовать участок березняка, и вы непременно найдете 2—3 дерева с вытекающим соком. При этом насекомые не только сидят на стволах деревьев, но и концентрируются на тех участках подстилки, куда попадает березовый сок. Здесь можно найти ряд уникальных видов жуков — некоторые стафилины, трухляки, блестянки и др.

После схода снежного покрова наступает время отлова беспозвоночных под лежащими на почве предметами. Особенно большие уловы бывают под листами железа, кирпичами и камнями, лежащими на солнечных местах, так как насекомые предпочитают теплоемкие, нагретые в течение дня укрытия. Чтобы увеличить сборы, можно разложить различные предметы на солнечных открытых местах (луг, поляна, степь и др.). Наилучшие сборы бывают в открытых биотопах еще и потому, что беспозвоночные с преимущественно ночной активностью предпочитают пережидать дневной период в ближайших к месту охоты или кормежки укрытиях и не совершать дальних миграций за пределы открытых участков.

Под различными предметами наиболее охотно прячутся жуки (жужелицы и стафилины), клопы, пауки и многоножки.

Когда почва прогреется и станут допустимыми земляные работы, можно заняться изготовлением искусственных гнездовий для перепончатокрылых (пчел и ос). Наиболее простой способ привлечения живущих в почве одиночных пчел — сооружение искусственных нор на крутых склонах оврагов, канав, обрывов, лишенных растительности. Для этого куском проволоки толщиной до 1 см под небольшим углом к горизонтальной плоскости продавливаются отверстия — так, чтобы дождевая вода не могла попадать в будущие норы. Глубина нор может быть различной — от 20 до 50 см.

Для привлечения одиночных пчел и ос, которые предпочитают развиваться в ходах древесных насекомых, необходимо в сухих пнях, стволах мертвых деревьев или вкопанных в почву бревнах просверлить отверстия диаметром до 1 см и глубиной 3—7 см. Заселение таких искусственных гнездовий, как правило, составляет около 95 %.

Не менее привлекательны для перепончатокрылых и гнездовья, сделанные из тростниковых трубок длиной около 15 см, собранных в блоки по 10—20 штук, причем непременное условие успешного заселения — наличие внутренней перемычки, т.е. отверстие не должно быть сквозным.

Для проведения углубленных исследований гнездования перепончатокрылых можно рекомендовать разборный улей, состоящий из двух обрезков досок размером 15x20 см и толщиной около 3 см.

На плоскости одного из обрезков необходимо сделать ряд канавок различной глубины, длины и конфигурации. При этом каждая из канавок должна подходить к краю обрезка. Скрепление двух частей досок с одной стороны навесами и с другой — защелкой позволяет получить разборный улей, который можно установить как вертикально, так и горизонтально по отношению к линии входных отверстий. Размещать такие гнездовья лучше на стенах домов, чердаках или стволах деревьев. После заселения (июнь) или, еще лучше, после вылета насекомых (август — сентябрь) улей можно раскрыть и обследовать структуру гнездовий: предпочитаемую глубину и диаметр ходов, число ячеек и др.

После установления теплой погоды у ряда видов насекомых начинаются расселительные миграции. В течение дня можно наблюдать в воздухе полет множества мелких жуков, мух и перепончатокрылых.

Появляется возможность для сбора интересных видов при помощи воздушного сачка, что бывает доступно для исследователей только в этот период, так как после нахождения удобных для дальнейшего развития мест эти насекомые надежно прячутся. Таким образом можно собрать ряд видов жуков-короедов, большую часть жизни проводящих под корой деревьев.

Необходимо также помнить, что даже кратковременные ранневесенние прогулки могут привести к уникальным находкам, так как в этот период виды насекомых, ведущие преимущественно ночной образ жизни, часто появляются днем из-за холодных ночей, т.е. вынуждены временно переходить на дневную активность.

В этот период можно использовать практически все известные способы сбора насекомых.

Хорошей эффективностью, особенно в июле — августе, обладают светоловушки, почвенные, оконные ловушки. Также применимы метод кошения воздушным сачком и метод разбора почвенных проб. Все эти методики хорошо известны и подробно описаны в разделе «Методы сбора и учетов насекомых»). Однако для их использования требуется специальная подготовка, поэтому в соответствии с поставленной задачей лучше остановиться на более простых и доступных способах исследования беспозвоночных.

Можно использовать ранее описанные методики — такие, как осмотр ловчих поясов на деревьях, наблюдение за заселением искусственных гнездовий для перепончатокрылых, разбор гниющих наносов на реках и ручьях, осмотр лежащих на почве предметов, тем более что состав насекомых в течение всего теплого сезона постоянно меняется.

Наибольшую пользу в этот период могут принести сборы воздушным сачком летающих в сумерках насекомых, особенно на опушках, у водоемов и над навозными кучами.

Существует много способов исследования насекомых, обитающих в водоемах и в непосредственной близости от них. Простейшую ловушку для водных жуков и клопов можно сделать из картона, уложив на поверхность воды две пластины из этого материала размером 30x30 см и более. Между кусками картона необходимо проложить тонкие ивовые прутики или стебли трав — так, чтобы образовалось небольшое, около 5 мм, пространство, которое используют водные насекомые в качестве укрытия. Данную ловушку нужно установить у берега и осматривать три раза в неделю.

Прибрежная зона водоемов, изобилующая мелкими беспозвоночными, притягивает огромное количество насекомых, что целесообразно использовать при проведении исследований. Простое устройство для отлова прибрежных насекомых можно сделать из жестяной полосы размером 100x10 см. Для этого необходимо скрепить обе короткие грани и получить квадратную раму размером 25x25 см. Данная конструкция на 3 см погружается в почву у границы с урезом воды, и внутреннее пространство заливается водой. Насекомые (жуки, клопы, двукрылые и др.) покидают свои убежища и всплывают на поверхностную пленку воды, где их можно легко собрать. Применение этой методики позволяет получать сопоставимые данные, на основании которых возможно сравнение различных участков прибрежной полосы.

Видовой состав околоводных насекомых можно изучать и без применения описанной рамы, а заливая участки почвы водой, но в этом случае невозможно будет подсчитать численность животных на единицу площади.

Хищных жуков — жужелиц и стафилинов — целесообразно собирать на участках грязи или мокрого песка у луж и других водоемов, где они охотятся на мелких беспозвоночных, причем необходимо помнить, что утром, в поддень и ночью состав охотников будет различным, поэтому необходимо проводить учет в разное время суток.

Определенные группы насекомых (некоторые виды жуков, клопов, двукрылых и др.) предпочитают не выходить на открытые пространства и держаться в траве у уреза воды. Для их поиска необходимо, осторожно раздвигая траву, обследовать данный участок. При этом насекомых легко обнаружить, так как они начинают перемещаться, потревоженные движением травы.

Если берега водоема каменистые, нужно тщательно обследовать участки почвы под камнями, потому что ряд видов насекомых предпочитают использовать их в качестве дневных укрытий. В засушливые периоды большинство насекомых прячутся под камнями непосредственно у береговой линии, а в дождливые — на некотором расстоянии от воды.

Для исследования лесных насекомых существует множество способов. Наиболее простой из них — стряхивание обитателей крон деревьев и кустарников (жуков, клопов, перепончатокрылых и др.). Для этого под деревом расстилают кусок ткани, после чего ударом палки о ветку стряхивают насекомых и быстро осматривают ткань. Наиболее эффективно применение этой методики рано утром, когда насекомые менее подвижны. Вместо куска ткани можно использовать раскрытый зонтик, особенно в случае исследования небольшой ветки или куста.

В лесных массивах одним из способов исследования видового состава крупных насекомых является маршрутный визуальный учет на дорогах или противопожарных полосах. Эта методика позволяет за короткий срок осмотреть большую площадь, лишенную растительности, где легко обнаружить насекомых — как живых, перебегающих открытое пространство, так и мертвых (раздавленных). Проходя определенное расстояние, к примеру, 100 шагов и записывая число встреченных на этом отрезке насекомых, можно сравнивать различные участки леса.

В случае проведения вырубок в урочищах или лесополосах необходимо тщательно обследовать стволы деревьев. Свежесрубленные стволы являются отличной приманкой для отдельных семейств жуков, главным образом дровосеков и короедов. В случае скопления бревен на небольшом участке их аттрактивное действие многократно возрастает, причем с течением времени бревна становятся все более привлекательными, так как состав жуков меняется с изменением влажности древесины.

Необходимо отметить, что различные породы деревьев привлекают различные виды насекомых, что также можно использовать, проводя сравнительное исследование энтомофауны отдельных пород деревьев.

Особенно интересный состав насекомых (двукрылые, жуки, перепончатокрылые и др.) можно обнаружить на поврежденных стволах, а также на пнях свежеспиленных деревьев, покрытых слоем загустевшего древесного сока. При этом необходимо обследовать и участок подстилки вокруг пня или ствола поврежденного дерева, так как здесь прячутся многие насекомые, питающиеся растительным соком, но выходящие из укрытий только ночью.

Многих насекомых — пчел, шмелей, наездников, бабочек, жуков и др. — привлекают цветущие растения. Если провести визуальные учеты количества насекомых, посещающих различные виды цветов за определенное время, к примеру, за 10 минут и в различные периоды суток (утром, в полдень и вечером), можно получить ответы на ряд вопросов:

какие виды цветов предпочитают пчелы, бабочки и жуки? какой цвет наиболее привлекателен для насекомых? какие группы насекомых опыляют растения утром, в полдень или вечером? и т.п.

Существует ряд способов отлова насекомых, основанных на их способности чувствовать запахи на огромных расстояниях. Многих бабочек, мух и жуков можно привлечь, если повесить на открытом, продуваемом ветром участке кусок ткани, смоченной забродившим вареньем, компотом и т.п. При этом днем на такую приманку охотнее садятся мухи и жуки, а в сумерках и ночью — различные виды бабочек, в том числе совок и бражников.

Для привлечения некрофагов — насекомых, питающихся трупами животных, необходимо найти мертвую птицу или небольшое животное (мышь, хомяк и т.п.), аккуратно зацепить проволокой и подвесить на небольшом расстоянии от поверхности почвы. При этом нужно соблюдать осторожность, так как на трупе может быть яд. Подвешивать мертвое животное лучше всего над вкопанной вровень с поверхностью почвы банкой, чтобы некрофаги, главным образом жуки мертвоеды, карапузики и блестянки, привлеченные запахом трупа, попадали в этот сосуд. Кроме жуков данная приманка очень эффективна для различных видов мух и некоторых бабочек, однако юным натуралистам следует ограничиться визуальными наблюдениями, так как мухи являются переносчиками многих болезней.

Весьма доступными объектами исследования являются копрофаги — насекомые, живущие в экскрементах млекопитающих. Это жуки-навозники, карапузики, стафилины, а также ряд видов мух. Наиболее удобен для изучения коровий помет, так как он обладает достаточно большой массой и соответственно сильнее привлекает насекомых. Для отлова жуков и личинок мух необходимо взять ведро, заполненное на 2/3 водой, лопатой или совком взять помет, погрузить его в воду и перемешать. Жуки немедленно начинают покидать укрытия, и их легко можно собрать с поверхности воды. Для повышения эффективности отлова нужно взять круг из металлической сетки с ячейкой 2 см, вырезанный по внутреннему диаметру ведра. К этому кругу необходимо прикрепить груз, чтобы сетка обладала достаточным весом для погружения коровьих лепешек в воду. После сбора с поверхности воды насекомых содержимое ведра следует немедленно вылить, чтобы избежать гибели животных, по каким-либо причинам оставшихся под водой.

Описанный метод выгонки насекомых — метод флотации — может быть эффективно применен также и для исследования проб подстилки, почвы, трухлявых пней и т.п.

При проведении экскурсий необходимо обращать внимание на искусственные и естественные ямы, канавы и т.п., так как в них часто скапливается значительное количество крупных жуков (навозников, долгоносиков, дровосеков и др.), неспособных выбраться из этих ловушек. Кроме того, при наличии мелких непроточных водоемов необходимо тщательно осматривать их поверхность, которая также является естественной ловушкой для насекомых.

Ценные наблюдения можно проводить на участках, лишенных растительности, — пляжах, песчаных карьерах, асфальтовых дорогах. Дело в том, что на таких участках легко можно обнаружить погибших насекомых, особенно крупных жуков, бабочек и шмелей. Учитывая возможность быстрого осмотра большой площади, экскурсии по открытым пространствам называют одними из наиболее плодотворных методов исследования.

Для исследования миграции крупных наземных беспозвоночных можно рекомендовать простой, но очень интересный метод. Необходимо взять сухой песок и просеять его через мелкое сито. Полученный таким образом порошок из мельчайшего песка рассыпать неширокой полосой на исследуемом участке, в зависимости от поставленной задачи — вокруг дерева, на берегу водоема и т.п. Периодически осматривая эти следовые полосы, можно определять время и направления миграции крупных жуков, гусениц и др. Чтобы научиться распознавать насекомых по следам, необходимо сделать песчаные полосы вокруг нескольких врытых вровень с поверхностью почвы банок. Всех попавших в ловушки насекомых нужно опускать на следовую полосу, а затем зарисовывать следы и записывать, кому они принадлежат.

Таким образом можно составить полевой определитель следов мелких наземных животных, что позволит впоследствии подсчитать численность и примерный состав отдельных групп беспозвоночных, прошедших по следовой полосе, без изъятия их из мест проживания.

Июнь—июль В сумерках можно проследить за процессом опыления цветов крупными ночными бабочками-бражниками. Наиболее подходящими для них являются заросли синяка — растения с длительным периодом цветения, что способствует концентрации бражников в районе его произрастания (на пустырях, опушках и т.п.). Бражники собирают нектар, не садясь на растение, а паря над соцветием и запуская длинный хоботок внутрь цветка.

Июль—август Это наиболее жаркий период. Продолжительная жара существенно влияет на поведение беспозвоночных, что можно эффективно использовать для их изучения и сбора. Значительное число видов беспозвоночных концентрируется в этот период в наиболее прохладных и влажных местах.

Неплохой материал можно собрать при обследовании подвалов и погребов. Ряд видов комаров и бабочек любят сидеть днем на стенах и сводах (потолках) подземных сооружений. Кроме того, на полу под лежащими предметами прячутся жуки, многоножки, мокрицы и другие беспозвоночные. Если же в подвале хранятся овощи, то численность животных будет значительно выше.

Берега различных водоемов (луж, прудов, рек и т.п.) в солнечные дни являются для многих беспозвоночных местом водопоя. Сюда слетается огромное количество бабочек, перепончатокрылых, мух и других животных. Особенно притягательны водоемы, расположенные в наиболее засушливых местах. Здесь можно не только отлавливать насекомых, но и проводить наблюдения за их поведением, так как осторожное и плавное приближение к водопою не пугает животных. Следует также помнить, что скопление беспозвоночных всегда привлекает хищников (жужелиц, стафилин, ос, стрекоз и др.), которых здесь легко обнаружить и отловить.

В местах, удаленных от воды, можно привлекать насекомых, расставляя поилки — различные сосуды с водой. Весьма эффективным методом сбора беспозвоночных является создание во время засухи влажных участков. Для этого необходимо залить участки почвы небольшим количеством воды (1—2 литра), положить на них пучки сена, травы или куски ветоши. Через несколько часов нужно осмотреть ранее залитую почву и собрать скопившихся животных — многоножек, жуков, двукрылых и т.п.

Неплохие сборы беспозвоночных можно получить при помощи раскапывания верхнего слоя почвы под лежащими предметами — камнями, бревнами и т.п. Для этого необходимо убрать лежащий предмет, при помощи лопаты срезать верхний слой почвы (до 10 см) и затем, аккуратно положив пробу почвы на кусок полиэтиленовой пленки, исследовать ее методом ручной разборки.

В периоды, когда дневная температура воздуха превышает + (30— 50) °С, многие виды насекомых с преимущественно дневной активностью временно меняют образ жизни и появляются в сумерках или ночью. Учитывая это, ночные экскурсии с электрическими фонариками могут привести к любопытным находкам, особенно если совершать прогулки по песчаным дорогам или другим местам без травяного покрова.

При длительной засухе можно собирать почвенных беспозвоночных (муравьев, коллембол и др.) при помощи специальных ловушек, принцип действия которых основан на привлечении животных влажными субстратами.

Первая ловушка состоит из двух пластиковых трубок длиной до 20 см, одна из которых свободно входит в другую. В почве делается вертикальное отверстие, в которое вставляется трубка большего диаметра. Затем трубка меньшего диаметра наполняется мокрым сеном или травой и вставляется в сделанное в почве отверстие. Через несколько часов внутреннюю трубку можно вынимать и осматривать ее содержимое.

Данная методика позволяет вести длительные исследования. При этом частицы почвы благодаря наличию внешней трубки не портят сборы.

Вторая ловушка состоит из двух квадратных кусков стекла, пластика или фанеры с приблизительными размерами 30x30 см, между которыми проложен слой мокрого картона.

Данная конструкция кладется на почву и на 1—2 см присыпается землей. Проверять содержимое этой ловушки можно через 1—2 суток, так как вода медленно испаряется, начиная от краев, и постепенно «притягивает» беспозвоночных к центру картонной прослойки.

Для привлечения слизней и улиток можно использовать половинки спелых яблок с вырезанной сердцевиной. Такие ловушки нужно расставлять вниз срезом по вечерам на почве в различных биотопах — на приусадебных участках, лесных опушках и др., а утром осматривать их и собирать скопившихся беспозвоночных.

В парках, садах и лесных урочищах интересные наблюдения можно сделать при обследовании стволов деревьев. Здесь встречаются различные виды жуков, мух, клопов и ночных бабочек, причем из последней группы в августе можно обнаружить крупнейших европейских совок — ленточниц (голубую, красную, малиновую и пр.). Заметить сидящих на стволах бабочек крайне сложно из-за их покровительственной окраски, поэтому необходимо взять сухую ветку дерева и, слегка проводя им по стволам, бабочек согнать. Как правило, днем ночные бабочки далеко не улетают и стараются сесть на ближайший ствол дерева, где ее уже можно легко отловить. При этом необходимо помнить, что с момента взлета и до посадки потревоженной бабочки необходимо стоять неподвижно, так как в случае продолжения движения и тем более погони насекомые могут улететь на значительное расстояние.

Сентябрь – октябрь До наступления периода холодных ночей необходимо в саду или парке сложить у оснований деревьев небольшие кучи сухой листвы или сена, чтобы создать искусственные места для зимовки многих видов беспозвоночных (пауков, жуков, клопов и др.). Если же выкопать в почве небольшую яму, например, 30x30x30 см, и засыпать ее листвой, привлекательность такого места зимовки будет во много раз выше. Сооружение зимовочных куч поможет сохранению многих беспозвоночных, особенно в регионах с суровым климатом. Кроме того, часть куч можно будет исследовать в морозный период для выяснения состава и численности зимующих животных.

Для снятия с деревьев паутинных гнезд яблонной, черемуховой и др. молей целесообразно использовать небольшой, 10 см, обрезок стального троса, привязанный на длинном шесте. Погрузив кончик такой «метелки» в центр гнезда молей и сделав несколько оборотов шеста вокруг своей оси, можно легко собрать гусениц. В случае массового размножения этих экономически опасных видов, вполне допустимо их использование в качестве корма для хищных насекомых (муравьев, жуков и др.), содержащихся в живых уголках. Для длительного сохранения гусениц их целесообразно держать в холодильнике в картонных коробках.

При этом температура не должна опускаться ниже минус 3 °С. Таким же образом можно хранить и прочие виды насекомых, отловленных специально для проведения исследований в зимний период.

Многие виды дневных бабочек зимуют в стадии куколки. Тщательно обследовав стены домов, заборы, чердаки и стволы деревьев, в отдельные годы можно собрать значительное количество куколок, которые дают возможность провести ряд интересных экспериментов.

Для того, чтобы в зимнее время из куколки вылетела бабочка, необходимо 2—3 недели держать ее при температуре около минус 1 °С (на улице или в холодильнике), а затем внести в теплое помещение.

Кроме того, разложив куколок по отдельным банкам или коробкам, можно собрать паразитов бабочек (мелких перепончатокрылых).

Для отлова ряда интересных видов насекомых — некоторых мух и комаров, стафилин и др. — нужно собрать в небольшие кучи на почве гнилые фрукты или овощи и периодически их осматривать, не забывая обследовать верхний слой почвы (1—2 см).

Время грибного сезона необходимо использовать для изучения специфичной энтомофауны — мицетобионтов. Это некоторые виды комаров, стафилины, личинки щелкунов и др. При этом собранные плодовые тела старых шляпочных грибов можно исследовать описанным выше методом флотации или методом ручной разборки.

Кучи угля, расположенные на освещенных солнцем местах, в течение дня аккумулируют тепло, часть которого может сохраниться до утра. В период холодных ночей множество беспозвоночных (жуки, многоножки, пауки и др.) концентрируются в теплых угольных кучах.

Для исследования видового состава скрывающихся животных необходимо аккуратно, чтобы их не раздавить, разобрать часть такой кучи.

В этом месяце следует заняться разбором ранее приготовленных куч листвы (см. «сентябрь»).

Кроме того, необходимо найти и отметить, например, флажками на длинной ручке несколько трухлявых пней для зимних исследований.

В дождливый период следует осматривать поверхности луж (см. «апрель»).

Интересный состав насекомых можно обнаружить под камнями, а также под крупными предметами, лежащими у границы весеннего затопления (см. «апрель»).

Особую ценность для энтомологических исследований имеет первый снегопад. Если на следующий день после снегопада стоит морозная погода, необходимо совершить экскурсию в лес или сад, так как на снегу очень хорошо видны насекомые — клопы, двукрылые и др., упавшие с деревьев. Данные, полученные таким образом, крайне интересны, потому что их практически невозможно получить иными способами.

Если после первого снегопада наступает оттепель, то в этом случае можно получить уникальные данные по численности и видовому составу насекомых открытых биотопов (степь, луг, поляна и т.д.). Методика исследования в этом случае чрезвычайно проста. Необходимо сделать снежный ком и прокатить его по исследуемому участку. Влажный снег хорошо снимается с еще не замерзшей почвы и захватывает с собой насекомых (жуков, клопов, мух и др.), которых можно легко собирать с поверхности снежного кома.

Большинство наземных насекомых осенью мигрируют на места зимовки и до весны пребывают в состоянии анабиоза. Исключение составляют ряд видов жуков, двукрылых, и некоторые другие насекомые, способные во время оттепелей передвигаться по снегу.

Зимние оттепели позволяют не только отлавливать насекомых, но и выделять на местности участки с более или менее обильными их выходами на поверхность снега, что, в свою очередь, делает возможным картирование мест зимовок различных видов насекомых. На южных стенах домов и стволах деревьев при аномальных потепления можно обнаружить ряд видов насекомых (см. «март»).

Наиболее предпочтительными для перезимовки насекомых являются трухлявые пни деревьев (особенно лиственных пород). В них отмечаются скопления различных видов жуков — до 174 экземпляров в 1 пне, а также клопы, двукрылые, перепончатокрылые и др. Для исследования трухлявых пней необходимо заранее, до выпадения снега, их отметить, например, флажками, так как впоследствии их обнаружить будет крайне сложно.

В целях более тщательного изучения энтомофауны трухлявые пни после удаления снега необходимо аккуратно разломать на небольшие кусочки и поместить в небольшой мешок из плотной ткани. Кроме остатков древесины необходимо исследовать и прилегающий к корням слой почвы толщиной около 3 см. Далее мешок с остатками пня нужно внести в теплое помещение и подвесить над сосудом для сбора воды.

После оттаивания содержимое мешка можно исследовать методом ручной разборки, когда тщательно просматривается каждая частица пня или почвы.

Этой же методикой можно пользоваться для исследования проб подстилки, мха и почвы, причем наиболее массовые сборы насекомых отмечаются в пробах, взятых на границах биотопов луг — лес, лес — опушка и т.д. Обнаруженных в пробах куколок бабочек, главным образом совок и пядениц, необходимо разложить по различным сосудам, снабдить этикеткой с указанием, где и когда обнаружена, и поставить в теплое помещение. Таким образом можно собрать коллекцию выведенных бабочек или их паразитов.

Сравнение богатства проб, взятых зимой и через месяц после схода снежного покрова, показывает, что зимние пробы в среднем более чем в 2 раза эффективнее весенних. Например, максимальное количество жуков в 1 пробе мха сфагнума зимой составило 245 экземпляров, а весной всего 48! Богатство зимних проб является следствием скопления у поверхности почвы насекомых, которые в теплый период рассредоточены по травянистой и древесной растительности.

Хорошие сборы возможны при обследовании подвалов и погребов, так как зимой состав фауны беспозвоночных, скрывающихся в подземных сооружениях, значительно отличается от летнего (см. «июль — август»). В частности, добавляется ряд видов бабочек, зимующих в стадии имаго, — зубчатокрылая совка, совка воинственная и др.

Интересный материал можно собрать на не замерзающих зимой участках почвы. Такие участки образуются по разным причинам, например, в местах прохождения теплотрасс.

Беспозвоночных, активность которых не прерывается даже в самые холодные периоды, можно привлекать, раскладывая различные предметы (желательно деревянные или пластиковые), под которыми они охотно прячутся.

Декабрь Если первый снегопад выпал только в этом месяце, то нужно воспользоваться ранее описанными методиками (см. «ноябрь»).

Особенно ценные данные можно получить в случае резкого похолодания при отсутствии осадков, когда водоем покрывается прозрачным льдом и превращается в гигантский аквариум. В этом случае (если лед достаточно прочен) появляется возможность визуального обследования большой площади водоема.

В этом месяце возможно появление первых насекомых на окнах в теплых помещениях (см. «март»).

6. МЕТОДИКА КОЛИЧЕСТВЕННОГО УЧЕТА ПТИЦ

Основные группы методик количественного учета птиц: площадные учеты, маршрутные учеты, точечные учеты. Маршрутные учеты. Общие требования к применению методов маршрутных учетов птиц.

Маршрут учета. Скорость продвижения во время учета. Соблюдение запланированного маршрута. Период учетов гнездящихся птиц. Время проведения учетов. Условия проведения учетов. Метод финских линейных трансектов. Рекомендации по применению метода финских линейных трансектов. Регистрация наблюдений. Сокращение названий. Стандартные символы. Расчет относительной плотности популяции птиц.

Методика учета на неограниченной полосе. Техника проведения учета.

Записи в полевом дневнике. Объем учетных работ. Обработка материала. Составление выборки учета. Расчет плотности населения птиц.

В настоящее время в большинстве стран мира применяются следующие три основные группы методик количественного учета птиц:

— методики картографирования территорий (площадочные учеты);

— методики линейных трансектов (маршрутные учеты);

— методики точечных учетов (точечные учеты).

Эти три группы методик одобрены Международным комитетом по учету птиц и для них выработаны международные стандарты.

Метод картографирования применяется при необходимости получить точные — близкие к абсолютным — данные о численности разных видов на данном конкретном участке территории, маршрутный метод — для получения силами ограниченного числа наблюдателей данных об относительных плотностях населения птиц в разных биотопах при их небольшой мозаичности, метод точечных учетов — для слежения за изменениями численности разных (модельных) видов, в том числе силами орнитологов-любителей, а также для исследований в очень мозаичном ландшафте.

В данном пособии рассматриваются два вида маршрутных учетов птиц – метод финских линейных трансектов и метод учета на неограниченной полосе. Обе методики вполне подходят для учетов птиц как в гнездовой, так и во внегнездовой сезоны. Тем не менее первую методику рациональнее использовать при изучении гнездовой орнитофауны, а вторую — во внегнездовое время.

Методами маршрутных учетов можно в короткое время обследовать большие территории и собрать большой объем материала, что очень важно в орнитологическом мониторинге.

Для проведения учетов необходимы хорошие знания по определению птиц. При учетах маршрутными методами можно использовать только тренированных наблюдателей, которые способны сохранять высокую внимательность при учете в течение 4–5 часов.

Так как целью учета является получение репрезентативного материала о сообществах птиц региона, за исключением водоплавающих, маршрут сначала надо запланировать на карте (плане).

В зависимости от целей проведения исследования в учетный маршрут можно включить либо все характерные биотопы (леса, болота и поля) в таких пропорциях, в каких они представлены в регионе, либо заложить несколько отдельных маршрутов в нескольких модельных биотопах, представляющих наибольший интерес.

Методики маршрутных учетов рассчитаны в первую очередь на обследование больших по площади территорий — не менее 1 квадратного километра. При обследовании такого участка учетный маршрут следует проложить по-возможности по прямой, пользуясь, например, квартальными просеками, или по слегка извилистой линии, например, по лесной дороге. Можно при этом закладывать и кольцевые маршруты, но так, чтобы диаметр кругового маршрута или периметр обследуемого квадрата были не меньше 1,5—2 км.

Если необходимо исследовать небольшой участок местности (и только именно этот участок) площадью менее 0,5 кв. км, пользоваться маршрутным методом нежелательно: после пересчета данных на площадь он даст искаженные результаты. В этом случае лучше использовать площадочный учет или учет в точке.

В лесной местности маршрут удобно планировать по просекам и дорогам, если они достаточно узкие, что не влияет на размещение птиц. Следует избегать пролегания маршрута по границе между двумя разными биотопами, особенно по опушкам.

Если главная задача учета – контроль за изменением численности птиц, изучение временной динамики численности на постоянном маршруте, то маршрут может проходить и по дорогам, где интенсивность движения транспорта небольшая.

Так как маршрутные методы не применимы для учета колониальных и водоплавающих птиц, маршруты учета желательно выбирать так, чтобы вблизи не было мест гнездования колониальных и полуколониальных видов. Массовые передвижения этих птиц усложняют проведение учета.

Учет нельзя проводить одновременно с другими работами, например, с контролем искусственных гнездовий: это может вызвать серьезные ошибки при получении данных.

При ведении целенаправленных мониторинговых исследований маршрут должен быть постоянным и обследоваться в течение нескольких лет, повозможности одним и тем же наблюдателем. Если обследование проводит другой наблюдатель, то результаты следует воспринимать как с другого маршрута или местности. При необходимости сравнения данных, полученных двумя наблюдателями, для установления индивидуальных различий в способности учитывать птиц необходимо проведение специального учета этими учетчиками одновременно, но независимо друг от друга.

Учетчик должен идти по маршруту медленно, часто останавливаясь, чтобы слушать птиц и записывать наблюдения. Если наблюдатель идет слишком быстро или слишком медленно, результаты будут не сравнимы. Рекомендуется учет проводить со скоростью от 1— 1,5 км/час в гнездовой сезон и до 2—5 км/час зимой — в зависимости от плотности птиц.

Не рекомендуется близко и надолго останавливаться возле сильно встревоженных птиц, поскольку тревожные крики могут привлечь соседних птиц к линии маршрута.

Медленное и равномерное проведение учета облегчает и соблюдение правильного маршрута, и определение пройденного расстояния (например, шагомером). Пройденные расстояния можно определить и по соответствующему плану или карте.

Невозможно все время оставаться на запланированном трансекте, поскольку необходимо контролировать расстояние до некоторых птиц, обходить труднопроходимые места, однако учетчик должен возвращаться на маршрут при первой же возможности.

Гнездящихся птиц следует учитывать в период, когда обнаруживаемость большинства видов сообщества наивысшая, — основной период учетов. В условиях средней полосы России это примерно с 20 мая по 20 июня.

В этот период рекомендуется проводить не менее двух учетов на каждом маршруте. При определении фенологических особенностей региона и данного года индикатором начала учета может служить прилет и начало активного пения таких видов, как садовая славка, иволга, пересмешка, чечевица.

Один учет рекомендуется провести также в период примерно с 20 апреля по 5 мая. Индикатором возможности начала учета может служить прилет и начало активного пения пеночки-теньковки. Это совпадает с периодом интенсивного пения таких относительно рано гнездящихся видов, как дрозды, зарянка, крапивник. Следует учесть, что в указанный период при учетах встречаются и пролетные особи ряда видов, которые иногда трудно отличить от особей, занявших постоянные территории (особенно у пеночек). Для определения ежегодного уровня численности гнездящихся особей таких видов следует использовать только данные основного периода учета.

При повторении учета в последующие годы на том же маршруте учет должен проводиться примерно в те же даты. Допускаются отклонения до 7 дней в обе стороны от даты учета первого года.

В течение всего года учет желательно начинать с восходом солнца (по местному времени) и заканчивать не позже, чем через 4—5 часов.

Исключением является зимний период в северных регионах, где учет можно проводить в течение всего светлого времени суток. При повторных учетах на том же маршруте с целью изучения временной динамики численности допускается отклонение до 30 минут от времени начала первого учета.

В гнездовой сезон после холодной ночи рекомендуется учет начинать несколько позже, но в любом случае его следует заканчивать до пяти часов после восхода солнца.

В гнездовой сезон и летом, когда плотность населения птиц небольшая, за одно утро можно провести учет на 5—6 километрах маршрута. Если маршрут включает в себя разные биотопы, желательно его планировать так, чтобы с восходом солнца учет шел в лесу и только потом на открытом ландшафте.

Учет не следует проводить, если дождь или ветер ощутимо влияют на интенсивность или слышимость пения птиц.

Бинокль во время учета рекомендуется использовать только при необходимости определения вида замеченных птиц. Нельзя использовать бинокль для поиска далеко расположенных птиц. Птицы, попавшие в поле зрения бинокля, но не замеченные ранее невооруженным глазом, в учет не вносятся.

В качестве международного стандарта маршрутного метода учета принята методика, разработанная в Финляндии (Jarvinen, Vaisanen, 1977 г.). Среди других методов маршрутных учетов метод финских линейных трансектов (ФЛТ) выделяется хорошим математическим обеспечением, что позволяет вычислять относительные плотности встречаемости разных видов, которые в 1,3—1,6 раза ниже абсолютных, а также статистически обрабатывать полученный материал.

Во время учета все встречаемые птицы, за исключением тех, что находятся позади наблюдателя, регистрируются на схеме маршрута (см. рисунок), на которой вертикальными линиями показан сам трансект (маршрут) и полосы по 25 м по обеим его сторонам (главная полоса учета).

Оставляется место и для отметки птиц, которые обнаружены дальше 25 м от трансекта — в дополнительной полосе учета. Две полосы вместе образуют общую полосу обследования.

На правой стороне листа (при необходимости на обоих краях) размещается краткая характеристика биотопа (для удобства — символами).

Горизонтальными линиями показываются границы между биотопами и/или участки маршрута длиной 100 метров.

На схеме начиная с нижнего края отмечаются все наблюдения с использованием символов и сокращенных названий птиц. Птицы отмечаются отдельно в главной (25 + 25 м) и дополнительных полосах учета, а также отдельно для каждого биотопа и/или для каждых 100 метров маршрута.

На рисунке дан образец записи регистрации при учете птиц методом ФЛТ. Заполнение листа (учетной карточки) начинается снизу. Для регистрации услышанных и увиденных птиц используются символы.

Можно использовать и более точную схему — при учетах на постоянном маршруте, например, контурную карту, как и при использовании площадочного метода учета (картографирования).

Во время учета поющий или иначе наблюдаемый самец интерпретируется как одна пара. Если самец не обнаружен, то самка, группа молодых особей или занятое гнездо тоже принимаются за одну пару.

Некоторые виды птиц гнездятся так рано, что во время учетов уже наблюдаются в стайках. Средний выводок, т.е. 2 взрослые птицы плюс среднее количество молодых, следует интерпретировать как пару.

В то же время у некоторых видов в гнездовое время можно встретить и негнездящихся, одиночных особей. Поэтому параллельно количеству пар необходимо использовать и общее количество отмеченных особей, что может оказаться более объективным показателем для определения ежегодного изменения численности разных видов птиц.

Желательно на маршруте отмечать границы между биотопами, чтобы при следующих учетах птицы отмечались отдельно, по биотопам.

Если птицы отмечаются отдельно для каждых 100 метров и параллельно отмечаются типы биотопов, также представляется удобным маркировать эти участки на маршруте.

Расстояние до птиц от трансекта (не от наблюдателя) определяется от того места, где птица была обнаружена в первый раз.

Птицы, летящие над главной полосой учета, причисляются к дополнительной полосе, даже если они впервые отмечены над главной полосой.

Для неопытного учетчика наибольшую трудность представляет определение расстояния в 25 метров. Частая ошибка — недооценка расстояния, т.е. слишком много птиц отмечается в главной полосе учета.

Расстояние до птиц необходимо проверять чаще и в различных биотопах: при этом обычно быстро вырабатывается способность правильно определять полосу, к которой следует отнести птицу.

На схеме маршрута рекомендуется использовать сокращенные видовые названия птиц. Сокращать названия видов можно произвольно, главное, чтобы они были понятны учетчику и во время обработки материалов.

В настоящее время используются три различные системы символов.

Одна система (мы называем ее Международной) одобрена в Дании, Франции, Великобритании, Норвегии, Швеции, Канаде и США. Другие две системы символов успешно применяются в Германии.

Приведем символы Международной системы, употребляемые для отметки наблюдений в поле.

А (A A ) — простой контакт с птицей вида А (визуальный или звуковой). При необходимости можно добавить символы пола — или А — контакт с птицей вида А с помощью любого звукового сигнала, кроме песни, который имеет территориальное значение.

А — контакт с поющей птицей вида А, которую увидели или зафиксировали с помощью песни.

— контакт с поющей птицей вида А, но место точно не установлено.

— агрессивная реакция между двумя видами А.

А А — два контакта с одной и той же птицей вида А. Добавление стрелки можно использовать для отметки наблюдаемого передвижения.

А- - -А — одновременный контакт с двумя разными птицами вида А.

(В двух последних случаях символы могут быть обведены, подчеркнуты или дополнены нестандартными символами).

А — гнездо вида А (количество яиц или птенцов; может быть добавлена другая информация о гнезде).

Маршрут Дата _Время Погода _ Дополнительная Главная полоса Дополнительная Биотоп Образец записи регистрации при учете птиц методом ФЛТ Плотность популяции рассчитывается по формуле:

где L — длина маршрута с точностью до 0,1 км;

n — количество пар данного вида, обнаруженных в общей полосе маршрута;

k — коэффициент коррекции, который рассчитывается для каждого вида в отдельности на основе данных всех учетов в регионе (или для каждого биотопа или группы биотопов в отдельности — если первичного материала для таких расчетов достаточно) по формуле: k = 40— 40(1-p), где р — доля (от 0 до 1) вида особей, отмеченных на главной полосе учета, от отмеченных в общей полосе.

Большинство наблюдений труднообнаруживаемых видов отмечается в главной полосе учета и соответственно их значения коэффициента коррекции больше. Для птиц с хорошей обнаруживаемостью большинство наблюдений дает дополнительная полоса учета и значения коэффициента при этом коррекции небольшие. Коэффициент коррекции, таким образом, характеризует обнаруживаемость вида в данном регионе (биотопе) и компенсирует влияние специфической обнаруживаемости вида на результат учета.


Коэффициент коррекции можно рассчитать при наличии 10 (лучше 30) случаев регистрации (встреч) вида, в том числе не менее одного — в главной полосе учета. С накоплением материала маршрутного учета коэффициент коррекции становится все точнее.

Из маршрутных методов учета, не требующих картографирования, наибольшее распространение в нашей стране получила методика «маршрутного учета без ограничения полосы обнаружения с расчетом плотности населения по средним дальностям обнаружения птиц» Ю.С. Равкина.

Этот метод по сравнению с методом ФЛТ отличается большей простотой как в части техники проведения учета, так и в отношении расчета плотности населения птиц. В учетах используются данные всех встреч птиц, поэтому метод Ю.С. Равкина наилучшим образом подходит для проведения рекогносцировочных (в том числе одноразовых) работ при учетах во внегнездовое время и при учете редких видов.

Во время учета наблюдатель идет по маршруту и записывает в полевой дневник всех встреченных, увиденных и услышанных, птиц, независимо от расстояния до них.

До начала учета в полевом дневнике отмечаются: место проведения учета (область, район, ближайший населенный пункт), дата, состояние погоды (облачность, температура, наличие ветра, высота снегового покрова, наличие снега на ветвях — кухты).

Для занесения результатов учета в полевом дневнике готовится небольшая таблица (табл. 6). В верхнем левом ее углу указывается время начала учета, а также время его окончания. В правой верхней части указывается название местообитания (биотопа), в котором будет проводиться учет: хвойный лес, фруктовый сад, городские кварталы и т.п. Название дается местообитанию для удобства и в зависимости от целей исследования.

Образец заполнения страницы полевого дневника при проведении маршрутного учета птиц Место: г. Москва, парк «Сокольники», главная аллея — 3-й квартал.

Дата: 10.12.1995.

Погода: t –10 °С, ветра нет, обл. 6, высота снегового покрова (ВСП) — 25 см.

При обнаружении птицы в полевом дневнике отмечаются:

— в колонке слева: вид птицы, — в колонке справа в одну строку: 1) количество особей, 2) характер пребывания птицы в местообитании, 3) расстояние до птицы в момент обнаружения.

Сущностью записи о характере пребывания птицы является информация о том, принадлежит ли встреченная особь данному местообитанию или летит через данное местообитание транзитом (т.е. наблюдатель не видел ни момента ее взлета, ни момента ее посадки). Для записи этой информации можно использовать любые обозначения, но чаще всего используются символы «с» («сидит») и «л» («летит»).

Расстояние до встречаемых на учете птиц определяется в момент обнаружения, т.е. в тот момент, когда птица только увидена или услышана. Расстояние определяется по прямой между учетчиком и птицей (группой птиц).

Во время учетов оценивается пройденное расстояние в километрах — по карте, квартальной сети, столбам линий электропередачи, путем подсчета шагов или, в крайнем случае, на глаз. Оценивается также чистое время учета в часах.

Для получения достоверных данных при использовании данного метода учета необходимо набрать достаточный «учетный километраж», т.е. пройти с учетом определенное минимальное расстояние. Это расстояние зависит от численности птиц на исследуемой территории.

В гнездовой период при высокой плотности населения птиц для получения корректных данных следует пройти с учетом не менее 5 км в каждом из обследуемых местообитаний (их набор и количество зависят от целей исследования), а в зимний период, при низкой численности птиц, — 15—20 км.

При проведении рекогносцировочных исследований желательно проводить учеты на маршруте однократно, набирая необходимый учетный километраж путем обследования различных частей местообитания в районе исследований. Если сделать это невозможно, например в силу отсутствия в районе данных биотопов большой протяженности, можно «набрать» необходимый учетный километраж путем двух-трехкратного прохождения с учетом одного и того же более короткого маршрута с интервалом в несколько дней. Злоупотреблять этим, однако, не следует, так как при таком учете достоверность полученного материала снижается.

По окончании периода работ и при условии набора достаточного объема данных (учетного километража) на основе записей в полевом дневнике составляется итоговая таблица — выборка учета (табл. 7). Выборка представляет собой перечень всех зарегистрированных в данном местообитании птиц за весь период работ с указанием количества встреченных особей по группам дальностей их обнаружения (расстояний, на которых они были зарегистрированы).

«Сидящие» птицы в выборке отмечаются точками и суммируются отдельно от «летящих», которые можно отмечать маленькими крестиками.

Выборка учета птиц в парке «Сокольники»

Даты учетов: 10, 12, 15, 21, 25, 28 декабря 1995 г. Общее пройденное расстояние L: 15 км (6 х 2,5 км) Общее время учета Н: 12 час.

плотность Расчет плотности населения птиц ведется для каждого из встреченных видов по отдельности по формуле: N = (n1 х 40) + (n2 х 10) + (n3 х 3) + n4 / L, где n1 — n4 — число особей, зарегистрированных в полосах обнаружения соответственно 0–25 м, 25–100 м, 100–300 м и 300–1000 м; 40, 10, 3 и 1 — пересчетные коэффициенты; L — учетный километраж (в километрах).

Пересчетные коэффициенты «расширяют» каждую из полос обнаружения до 1 километра. Для полосы 0–25 м этот коэффициент равен 40 (25 метров в 40 раз меньше километра), для полосы 25–100 м – 10 (100 метров в 10 раз меньше 1 км), для полосы 100–300 м – 3 (точнее – 3,33), для полосы 300– 1000 м – 1.

При желании получить более точные данные можно разбить обследуемую полосу на более дробные категории, например, отмечая птиц отдельно в полосах до 10 м (при этом коэффициент будет равен 100), 20 м (К=50), 50 м (К=20) и т. д.

Полученные для каждой полосы обнаружения произведения суммируются и записываются в графу n выборки. После этого полученное число делится на количество пройденных с учетом километров.

Для птиц, встреченных летящими, пройденное расстояние L заменяется на суммарное время учета в часах Н, умноженное на 30 — среднюю скорость полета птиц (в км/час); т.е. n / (Н х 30).

В графе N данные по плотности «сидящих» и «летящих» птиц суммируются.

СПИСОК РЕКОМЕНДУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

К разделу 1. Методика зимнего маршрутного учета млекопитающих по следам [Текст] / сост. А.С. Боголюбов. — М., 1997. – 13 с.

2. Методические указания по организации, проведению и обработке данных зимнего маршрутного учета охотничьих животных в РСФСР [Текст] / сост. В.А. Кузякин, Н.Г. Челинцев, И.К. Ломанов. — М., 1990.

3. Цветков, А.В. Зимняя экология копытных млекопитащих Подмос-ковья [Текст] / А.В. Цветков. — М. : МГСЮН, 2001. — 76 с.

К разделу 1. Богданов-Катьков, Н.Н. Руководство к практическим занятиям по общей энтомологии [Текст] / Н.Н. Богданов-Катьков. — М. ; Л. : Сельхозгиз, 1947. – 356 с.

2. Дунаев, Е.А. Методы сбора и учетов численности насекомых [Текст] :

методическое пособие / Е.А. Дунаев, А.С. Боголюбов. — М. : Экосистема, 1996. – 25 с.

3. Мурзин, В.С. Бабочки (атлас) [Текст] / В.С. Мурзин. — М. : Тропа, 1993. – 48 с.

4. Нидон, К. Растения и животные [Текст] : рук. для натуралиста : пер.

с нем. / К. Нидон [и др.]. — М. : Мир, 1991. – 263 с.

5. Павлович, С.А. Составление коллекций по естествознанию [Текст] :

пособие для учителей / С.А. Павлович. — Л. : Учпедгиз, 1947 – 268 с.

6. Плавильщиков, Н.Н. Краткий определитель наиболее распространенных насекомых Европейской части России [Текст] / Н.Н. Плавильщиков. — М. : Топикал, 1994. – 544 с.

7. Райков, Б.Е. Зоологические экскурсии [Текст] / Б.Е. Райков, М.Н. Римский-Корсаков. — М. : Топикал, 1994. – 640 с.

К разделу 1. Буйволов, Ю.А. Физико-химические методы изучения качества природных вод [Текст] / Ю.А. Буйволов. — М. : Экосистема, 1997. – 17 с.

2. Ганьшина, Л.А. Методика оценки экологического состояния водоемов по организмам зообентоса [Текст] / Л.А. Ганьшина, Т.П. Горидченко.

— М. : ЦСЮН, 1994. – 37 с.

3. Жадин, В.И. Жизнь пресных вод [Текст] — Т.1, 2 / В.И. Жадин. — М. ; Л. : Изд-во АН СССР, 1940, 1949.

4. Методы гидрологических исследований: проведение измерений и описание рек [Текст]. — М. : Экосистема, 1996.

5. Методы гидрологических исследований: проведение измерений и описание озер [Текст]. — М. : Экосистема, 1996.

6. Методы исследований зообентоса и оценки экологического состояния водоемов [Текст]. — М. : Экосистема, 1997.

Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР (планктон и бентос) [Текст]. — Л. : Гидрометеоиздат, 1977.

8. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений [Текст]. — Л. : Гидрометеоиздат, 1983. — Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем [Текст] / под ред. В.А.Абакумова. — СПб. : Гидрометеоиздат, 1992. — 318 с.

10. Хейсин, Е.М. Краткий определитель пресноводной фауны [Текст] / Е.М. Хейсин. — М. : Учпедгиз, 1962. — 147 с.

1. ГОСТ 17.1.3.07-82. Охрана природы. Гидросфера. Правила контроля качества воды водоемов и водотоков [Текст]. — М. : Изд-во стандартов, 1982.

2. Жадин, В.И. Методы гидробиологического исследования [Текст] / В.И.

Жадин. — М. : Высшая школа, 1960. — 189 с.

Котов, А.А. Методы исследований пресноводного зоопланктона [Текст] : методическое пособие / А.А. Котов, А.С. Боголюбов. — М. :



Pages:     | 1 || 3 |
 


Похожие работы:

«Министерство образования и науки Российской Федерации ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ РОССИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ГИДРОМЕТЕОРОЛОГИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ Ф к л т т ачоо бчня а у ь е зонг оуеи МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ по дисциплине СИСТЕМНАЯ ЭКОЛОГИЯ Сеилнсь 320300 - геоэкология пцаьот П д е и взрт о л ж т овау н ф к л т т ачоо бчня а а у ь е зонг оуеи РГГМУ Санкт-Петербург О о рн У е ы с в т мф к л т т эоои д беа ч н м о е о а у ь е а клги и иии ррдо сеы...»

«ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО ОБРАЗОВАНИЮ Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Уральский государственный университет им. А.М. Горького ИОНЦ ЭКОЛОГИЯ И ПРИРОДОПОЛЬЗОВАНИЕ БИОЛОГИЧЕСКИЙ факультет кафедра ЭКОЛОГИИ УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКИЙ КОМПЛЕКС ДИСЦИПЛИНЫ ОСНОВЫ ЭКОЛОГИЧЕСКОГО КАРТОГРАФИРОВАНИЯ Методические указания к изучению дисциплины Екатеринбург 2008 Методические указания к изучению дисциплины “Основы экологического картографирования” Курс “Основы...»

«СОСУДИСТЫЕ РАСТЕНИЯ РЕСПУБЛИКИ КОМИ (В ПОМОЩЬ ПРЕПОДАВАТЕЛЯМ ЭКОЛОГОБИОЛОГИЧЕСКИХ ДИСЦИПЛИН) ЧАСТЬ II. СЕМЕННЫЕ РАСТЕНИЯ (сем. СОСНОВЫЕ – сем. ПИОНОВЫЕ) Фото из архива ГОУ ДОД Коми РЭБЦ Сосудистые растения Республики Коми. Часть II. Семенные растения (сем. Сосновые – сем. Пионовые). Учебное наглядное пособие / сост. А.А. Кочетков; ГОУ ДОД Коми РЭБЦ. Сыктывкар, 2012, 44 с., ил. Разработка представляет собой фотоальбом, в котором растения размещены в соответствии с аннотированным списком...»

«База нормативной документации: www.complexdoc.ru Российское акционерное общество Газпром Всероссийский научно-исследовательский институт природных газов и газовых технологий (ВНИИГАЗ) УТВЕРЖДАЮ Член Правления РАО Газпром _ В.Г. Падюк Методические указания по расчету выбросов загрязняющих веществ в атмосферу от установок малой производительности по термической переработке твердых бытовых отходов и промотходов СОГАСОВАНО: РАЗРАБОТЧИКИ: Начальник Управления Генеральный директор прогресса и...»

«БЕЛОРУССКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ БИОЛОГИЧЕСКИЙ ФАКУЛЬТЕТ Кафедра микробиологии ОФОРМЛЕНИЕ КУРСОВЫХ И ДИПЛОМНЫХ РАБОТ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ Для студентов специальности Биология МИНСК 2011 А в т о р ы - с о с т а в и т е л и: Р. А. Желдакова, О. В. Фомина, В. В. Лысак Оформление курсовых и дипломных работ. Метод. указания / Сост. Р. А. Желдакова, О. В. Блажевич, В. В. Лысак Мн.: БГУ, 2011. 24 с. В данном издании приведены методические указания, рекомендации и требования по оформлению...»

«Министерство образования и науки РФ Негосударственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Самарский медицинский институт “РеаВиЗ” А.А. Девяткин О.Ю. Жук А.А. Супильников А.В. Чигарева ОСНОВЫ ОБЩЕЙ ИСТОРИИ РОССИЙСКОЙ МЕДИЦИНЫ И ФАРМАЦИИ Учебное пособие для студентов фармацевтического факультета очно-заочной и заочной форм обучения Самара 2009 УДК 614.(075.8) Рецензенты: – профессор, доктор биологических наук О.С. Сергеев; – профессор, доктор медицинских наук Р.А....»

«ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО ОБРАЗОВАНИЮ Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Ульяновский государственный технический университет ГЕОЛОГИЯ Учебное пособие по курсу Науки о Земле для студентов, обучающихся по специальности 28020265 Инженерная защита окружающей среды Составитель В. А. Михеев Ульяновск 2009 УДК 55 (075) ББК 26.3 я7 Г 36 Рецензенты: заведующий кафедрой Общая экология экологического факультета Института медицины, экологии и физической культуры...»

«База нормативной документации: www.complexdoc.ru Научно-исследовательский институт охраны атмосферного воздуха (НИИ Атмосфера) Федеральной службы по экологическому, технологическому и атомному надзору МЕТОДИЧЕСКОЕ ПОСОБИЕ ПО РАСЧЕТУ, НОРМИРОВАНИЮ И КОНТРОЛЮ ВЫБРОСОВ ЗАГРЯЗНЯЮЩИХ ВЕЩЕСТВ В АТМОСФЕРНЫЙ ВОЗДУХ (Дополненное и переработанное) Санкт-Петербург 2005 Настоящее пособие является переработкой изданного Методического пособия по расчету, нормированию и контролю выбросов загрязняющих веществ...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РФ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ ВОРОНЕЖСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ЗЕМЛЯ — ПЛАНЕТА СОЛНЕЧНОЙ СИСТЕМЫ (ИСТОРИЯ РАЗВИТИЯ ПРЕДСТАВЛЕНИЙ ОТ АНТИЧНЫХ ВРЕМЕН ДО СЕГОДНЯШНИХ ДНЕЙ) Учебное пособие для вузов Составитель Л. Д. Стахурлова Издательско-полиграфический центр Воронежского государственного университета Утверждено научно-методическим советом биолого-почвенного факультета 13 октября 2010 г., протокол №...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ АГЕНТСТВО ПО ОБРАЗОВАНИЮ САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИНФОРМАЦИОННЫХ ТЕХНОЛОГИЙ, МЕХАНИКИ И ОПТИКИ М.Г. Томилин НОВЫЙ ПОЛЯРИЗАЦИОННООПТИЧЕСКИЙ МИКРОСКОП НА ОСНОВЕ ЖИДКОКРИСТАЛЛИЧЕСКОГО ПРОСТРАНСТВЕННО-ВРЕМЕННОГО МОДУЛЯТОРА СВЕТА И ЕГО ПРИМЕНЕНИЯ Учебное пособие Санкт-Петербург 2009 2 Томилин М.Г. Новый поляризационно-оптический микроскоп на основе жидкокристаллического пространственно-временного модулятора...»

«Методические рекомендации по использованию учебно-методического обеспечения по биологии в 2011-2012 году Методист кафедры естественнонаучного образования Н.В. Дмитриева 2012 г Введение Задачи, стоящие перед школьным биологическим образованием, реализуются через учебные программы и учебники, разработанные на основе нормативов, утвержденных Министерством образования и науки РФ. Учебник - главный компонент учебно-методического комплекта (УМК), один из основных источников знаний, необходимых для...»

«МИНИСТЕРСТВО ВЫСШЕГО И СРЕДНЕГО СПЕЦИАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ СССР НАУЧНО-МЕТОДИЧЕСКИЙ КАБИНЕТ ПО ЗАОЧНОМУ И ВЕЧЕРНЕМУ ОБУЧЕНИЮ МОСКОВСКОГО ГОСУДАРСТВЕННОГО УНИВЕРСИТЕТА ИМ. М. В. ЛОМОНОСОВА В. Н. ВЕХОВ, Л. И. ЛОТОВА, А. Н. СЛАДКОВ, В. Р. ФИЛИН ПОСОБИЕ ПО СИСТЕМАТИКЕ ЦВЕТКОВЫХ РАСТЕНИЙ МЕТОДИЧЕСКОЕ РУКОВОДСТВО ДЛЯ ЛЕТНЕЙ ПРАКТИКИ Под редакцией профессора Н. Н. Кадена ИЗДАТЕЛЬСТВО МОСКОВСКОГО УНИВЕРСИТЕТА Р е ком е н до ва н о кафедрой высших растений биологического факультета МГУ Рецензенты: канд....»

«МИНИСТЕРСТВО СПОРТА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНЫЙ НАУЧНЫЙ ЦЕНТР ФИЗИЧЕСКОЙ КУЛЬТУРЫ И СПОРТА МЕЖРЕГИОНАЛЬНАЯ АССОЦИАЦИЯ ПРИКЛАДНОЙ КИНЕЗИОЛОГИИ ПРИКЛАДНАЯ КИНЕЗИОЛОГИЯ В СПОРТЕ ВЫСШИХ ДОСТИЖЕНИЙ Методические рекомендации Москва – 2013 г. УДК 796/799 ББК 75.0 ISBN 978-5-94634-056-4 Васильева Л.Ф. Прикладная кинезиология в спорте высших достижений. Методические рекомендации. – М.: ООО Скайпринт, 2013. – 104 с. В предлагаемых методических рекомендациях представлена прикладная кинезиология, как...»

«Федеральное агентство по образованию Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Рязанский государственный университет имени С.А. Есенина В.А. Марков, Е.С. Иванов, Е.А. Лупанов Биоразнообразие и охрана природы Учебное пособие Рязань 2009 ББК 20.1я73 М26 Печатается по решению учебно-методического совета Государственного образовательного учреждения высшего профессионального образования Рязанский государственный университет имени С.А. Есенина в соответствии с...»

«Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Владимирский государственный университет имени Александра Григорьевича и Николая Григорьевича Столетовых В. А. Фролов МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕККОМЕНДАЦИИ К СПЕЦКУРСУ ДЛЯ РОДИТЕЛЕЙ ПРОФИЛАКТИКА АЛКОГОЛЬНОЙ, НАРКОТИЧЕСКОЙ, ТОКСИКОМАНИЧЕСКОЙ И ИГРОВОЙ ЗАВИСИМОСТЕЙ СТАРШЕКЛАССНИКОВ В СЕМЬЕ И РЕФЕРЕНТНОЙ ГРУППЕ Владимир 2012 УДК – 371 ББК – 74.00 Ф 91...»

«Министерство образования Российской Федерации ГОУ ВПО Уральский государственный технический университет – УПИ Центр повышения квалификации работников образовательных учреждений по вопросам профилактики зависимостей от ПАВ в образовательной среде УрФО Бароненко В.А., Рапопорт Л.А. КУЛЬТУРА ЗДОРОВЬЯ СТУДЕНТА Учебное пособие Научный редактор профессор, доктор биологических наук В.А. Бароненко Рецензенты: доктор биол. наук, академик РАН В.Н. Большаков, доктор биол. наук, профессор В.И. Лупандин. г....»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ УКРАИНЫ ОДЕССКИЙ НАЦИОЛНАЛЬНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ И. И. МЕЧНИКОВА Биологический факультет КАФЕДРА ЗООЛОГИИ МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ к выполнению контрольных работ курсу Популяционная морфология студентами заочной формы обучения биологического ф-та Одесса - 2012 Методические рекомендации по выполнению контрольных работ по специальному курсу „ Популяционная морфология” Одесский национальный университет имени И. И. Мечникова, 2012. Составитель: доцент, к.б.н....»

«УДК 582.2/.3:001.4 Пчелкин А. В. Популярная лихенология. — М. МГСЮН, 36 с. Учебное пособие содержит общие сведения о строении, жизненных формах, размножении, распространении лишайников. Описана роль лишайников в природных сообществах, а также в использовании лишайников человеком. Приводятся рекомендации по определению лишайников. Издание предназначено для педагогов учебных эколого-биологических объединений и обучающихся учреждений дополнительного образования, учителей школ, школьников,...»

«База нормативной документации: www.complexdoc.ru Научно-исследовательский институт охраны атмосферного воздуха (НИИ Атмосфера) Федеральной службы по экологическому, технологическому и атомному надзору МЕТОДИЧЕСКОЕ ПОСОБИЕ ПО РАСЧЕТУ, НОРМИРОВАНИЮ И КОНТРОЛЮ ВЫБРОСОВ ЗАГРЯЗНЯЮЩИХ ВЕЩЕСТВ В АТМОСФЕРНЫЙ ВОЗДУХ (Дополненное и переработанное) Санкт-Петербург 2005 Настоящее пособие является переработкой изданного Методического пособия по расчету, нормированию и контролю выбросов загрязняющих веществ...»

«С.А. Балашенко В.Е. Лизгаро Т.И. Макарова А.А. Жлоба ЭКОЛОГИЧЕСКОЕ ПРАВО Учебно-методическое пособие для студентов Белорусского государственного университета, обучающихся по неюридическим специальностям Минск БГУ 2009 УДК ББК Авторы-составители: С. А. Балашенко – заведующий кафедрой экологического и аграрного права Белгосуниверситета, доктор юридических наук; В. Е. Лизгаро – доцент кафедры экологического и аграрного права Белгосуниверситета, кандидат юридических наук; Т. И. Макарова – доцент...»






 
© 2013 www.diss.seluk.ru - «Бесплатная электронная библиотека - Авторефераты, Диссертации, Монографии, Методички, учебные программы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.